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dc.contributor.authorAlvarado-Ulloa, Carloses_CR
dc.date.accessioned2006-10-23T17:00:05Zes_CR
dc.date.accessioned2007-04-19T17:48:10Zes_CR
dc.date.accessioned2011-11-25T01:55:37Z
dc.date.available2006-10-23T17:00:05Zes_CR
dc.date.available2007-04-19T17:48:10Zes_CR
dc.date.available2011-11-25T01:55:37Z
dc.date.issued2000es_CR
dc.identifier.urihttps://hdl.handle.net/2238/1318es_CR
dc.descriptionProyecto de Graduación (Bachiller en Ingeniería en Biotecnología) Instituto Tecnológico de Costa Rica. Escuela de Biotecnología, 2000.es_CR
dc.description.abstractSe inocularon ápices con 3 a 4 primordios foliares provenientes de brotes laterales de plantas de Cattleya skinneri y Cattleya skinneri x Cattleya maxima. Previamente fueron sometidos a 4 tratamientos de desinfección, siendo el más efectivo el que consistió de una doble desinfección con NaOCl (al 3% y 1%, por 10 y 20 minutos, respectivamente) con una previa inmersión en alcohol 95% por 5 minutos. Las soluciones de NaOCl se utilizaron con 0,5% de Physan 20®; antes de la inoculación en medio aséptico se sumergieron en Ácido Cítrico (100 mg/l) sin resultados efectivos, produciéndose una gran mortalidad de explantes. El medio líquido resultó ser el más efectivo en las etapas de introducción y multiplicación, mientras que el medio semisólido en la etapa de enraizamiento. C. skinneri respondió mejor en medio MS (1962) complementado con 0,1 mg/l ANA, 0,2 mg/l KIN y 15% v/v Agua de Coco en la formación de cuerpos protocórmicos, comportamiento contrario a C. skinneri x C. maxima que mostró una mejor en medio Knudson C (1946) modificado. La separación de brotes adventicios fue la forma más efectiva de propagación en medio de multiplicación suplementado con 0,18 mg/l ANA, 0,22 mg/l KIN y 15% v/v Agua de Coco). El mayor índice de brotación lo presentó C. skinneri. Tanto esta especie como el híbrido respondieron mejor en medio Knudson C (1946) modificado de acuerdo al índice de brotación. La etapa de enraizamiento sólo se realizó en vitroplantas de C. skinneri, las cuales se cultivaron en medio Knudson C (1946) con el 50% de la concentración de sales y sin reguladores de crecimiento. Aunque el enraizamiento se dio tanto en medio líquido como semisólido, fue este último el que indujo mayor crecimiento vegetal y número de raíces.es_CR
dc.description.sponsorshipJardín Botánico Lankester, Universidad de Costa Rica.es_CR
dc.format.extent572638 byteses_CR
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dc.format.extent1835 byteses_CR
dc.format.mimetypeapplication/pdfes_CR
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dc.format.mimetypetext/plaines_CR
dc.language.isoeses_CR
dc.publisherC. Alvarado U.es_CR
dc.subjectApises_CR
dc.subjectInoculaciónes_CR
dc.subjectExplanteses_CR
dc.subjectEnraizamientoes_CR
dc.subjectVitroplantases_CR
dc.subjectBIOTes_CR
dc.titleMicropropagación de Cattleya skinneri y Cattleya skinneri x Cattleya maxima por cultivo de ápiceses_CR
dc.typeinfo:eu-repo/semantics/bachelorThesises_CR


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